組蛋白提取

組蛋白有四種類型：H2A、H2B、H3、H4，組蛋白是染色體基本結構蛋白，因富含堿性氨基酸 Arg 和 Lys 而呈堿性，可與酸性的 DNA 緊密結合。因為組蛋白是偏堿性的，因此我們可以使用酸法來提取。

實驗操作步驟：

1、將 3-5×105 個細胞種到 6 孔板中，接著進行自己需要的實驗處理，處理結束后開始收蛋白，先用 1×PBS 將細胞洗兩次，每次吸盡上清。

2、每孔加入 200ul NETN 裂解液，冰上裂解 15min

3、用細胞刮刮細胞，將細胞收集于 1.5mlEP 管中，1500g,4℃，離心 10min

4、離心結束后可以在管底看到一小團接近透明的沉淀，小心吸盡上清，用 1ML NETN buffer 洗沉淀一次或兩次，1500g,4℃，離心 10min

5、吸盡上清，小心吸，沉淀容易被吸走，加入 0.2M HCL 100ul （濃鹽酸的濃度為 12M）冰水裂解 30min,(30min 后沉淀變成一個白色的小團塊)

6、12000RPM，4℃，15min 離心，此時組蛋白已經溶解在上清中，將上清轉移到新的 EP 管中，加入 20ul 的 1M Tris ph=8.0 中和酸性（5 倍體積的 HCL 加 1 倍體積的 1M Tris PH=8.0, 如 100ul 的上清中，可加入 20ul 的 1M Tris。

若中和不充分，則在下一步加入 SDS 的時候溶液會呈現黃色，可適量補加 1M Tris PH=8.0，只到溶液恢復藍色）。

7、可用考馬斯法測蛋白濃度

8、用 SDS 煮蛋白，100℃，10min.。接下來可進行 Western blot 實驗。

9、跑膠時，上樣量為 5ug 時比較適宜?？梢愿鶕约旱木唧w實驗進行調整。